Core Facility für Histopathologie und Digitale Pathologie
Die Core Facility für Histopathologie und Digitale Pathologie unterstützt als Technologieplattform durch standardisierte und qualitätsgesicherte Prozesse lokale, nationale und internationale Wissenschaftler bei der feingeweblichen Analyse von humanen Gewebeproben und davon abgeleiteten Derivaten sowie der Entwicklung innovativer gewebebasierter Methoden.
Die Core Facility für Histopathologie und Digitale Pathologie wird geleitet von Herrn PD Dr. Peter Bronsert und Herrn PD Dr. Dr. Christoph Schell.
Bei Fragen zu Projekten, Gewebeprozessierung, Untersuchungen oder Kooperationen erreichen Sie uns über: pathologie.projektkoord@uniklinik-freiburg.de
Wir freuen uns, Ihre Projekte aus der Medizinischen Fakultät des Universitätsklinikums Freiburg, weiteren Fakultäten der Universität Freiburg und Projekte externer Kooperationspartner unterstützen zu dürfen.
Die Core Facility für Histopathologie und Digitale Pathologie unterstützt folgende Analysen:
- Makroskopische und mikroskopische Gewebebeschreibungen
- Gewebeprozessierung
- Histochemie Färbungen und Auswertungen
- Immunhistochemische Färbungen und Auswertungen
- Digitale Pathologie und digital assistierte Auswertung histochemischer und immunhistochemischer Färbungen
Leistungsangebot CFHDP
Schnitterstellung
- Leica CM 1950
- Leica RM 2255
- Leica IP C Injekt Printer Kassettendrucker
- Slice Culture / Vibratom
- HistoCore Arcardia C - Kühlplatte
Tissue MicroArray (TMA) Erstellung
Histochemie Färbung und Auswertung
(u.a. Hämatoxylin / Eosin, Periodic acid-Schiff, Elastika-van-Gieson-Färbung)
- Dako Cover Stainer
- TissueTek Prisma
- KI-unterstützte Bildanalyse mit QuPath
- Leica ST4020 kompakter linearer Färbeautomat
Immunhistochemie und Auswertung
(> 230 etablierte Färbungen)
Schnittbilddigitalisierung
- 3D Histech Panoramic Scan
- Roche Ventana DP 200
- 3DHISTECH Pannoramic 1000 Flash IV
- SliceCenter - Datenbank für Ihre Gewebeschnitte
Pseudonymisierung
Im Rahmen einer- in Kooperation mit der Core Facility für Histopathologie und Digitale Pathologie- geplanten Promotion oder eines gemeinsamen Forschungsvorhabens, werden die neuen Doktorand*innen und wissenschaftliche Mitarbeiter*innen (im folgenden Mitarbeitende) umfassend in die örtlichen Strukturen und benötigten Methoden eingearbeitet. Dieses findet anhand eines festgelegten und innerhalb von roXtra (Intranet) hinterlegten Einarbeitungsplanes statt.
Gestartet wird mit dem Einarbeitungsgespräch (und ggf. der Unterzeichnung der Promotionsvereinbarung). Im Laufe der ersten Woche lernen die neuen Mitarbeitenden das Institut für Klinische Pathologie und die Core Facility für Histopathologie und Digitale Pathologie, deren Strukturen sowie Arbeitsabläufe kennen. Dieses beinhaltet u. a. auch die Einführung zu QM-relevanten Themen und zum allgemeinen Ablauf am Arbeitsplatz Labor. Anschließend werden die pathologiespezifischen Themen mit der Einführung in die IT Systeme, die Histopathologie und die individuell benötigten Labortätigkeiten gemeinsam erarbeitet.
Nach vier Wochen erfolgt das erste Zwischengespräch mit dem / der zugeteilten Tutor*in. Das Erlernte wird rekapituliert, notwendige Vertiefungen sowie aufgetretene Schwierigkeiten erörtert, Lösungen gefunden und das weitere Vorgehen abgestimmt.
Bei Bedarf werden die Mitarbeitenden in die Methoden der digitalen Pathologie eingearbeitet. Dieses beinhaltet die Handhabung unterschiedlicher Slide Scanner und KI-Bildanalysesoftware.
Nach acht Wochen findet das Abschlussgespräch, mit der Planung der nächsten Arbeitsschritte, notwendiger Anpassungen und Fortbildungen, statt. Ferner ist eine gemeinsame Evaluation der Einarbeitung vorgesehen, um diese gegebenenfalls anzupassen bzw. zu optimieren.
Auer, Susanne | Sekretärin | ||
Auer, Thorben | Aushilfe IT | ||
Bronsert, Peter | PD Dr. | Leiter | |
Eckermann, Tanja | Qualitäts- und Prozessmanagement | ||
Hölzle, Annabel | Wissenschaftliche Hilfskraft | ||
Kurowski, Konrad | Arzt | ||
Meier, Nadine | Chemisch-Technische Assistentin | ||
Reinold, Meike | Projektkoordination / Projektmanagement | ||
Schell, Christoph | Prof. Dr. Dr. | Vertreter | |
Schmid, Marlene | Medizinisch-technische Assistentin (MTA) | ||
Timme-Bronsert, Sylvia | Dr. | Stellvertreterin | |
Übelin, Anja | Wissenschaftliche Hilfskraft |
Dr. med. h.c. Erwin Braun Stiftung Basel | Basel | |||
Prof. | Dr. | Horst Zitzelsberger | Abteilung Strahlenzytogenetik | Helmholtz Institut GmbH Neuherberg |
Andrew L. Warshaw | Department of Surgery | Massachusetts General Hospital | ||
Dr. | Laura Tang | Department of Pathology | Memorial Sloan Kettering Cancer Center New York | |
Jürgen Frerichs | Forschung und Entwicklung | Oncodianova GmbH Hamburg | ||
Prof. | Dr. | Elmar Stickeler | Interdisziplinäres Zentrum für Klinische Forschung | RWTH Aachen University |
Prof. | Dr. | András Matolcsy | Institut für Pathologie | Semmelweis Universität Budapest |
Prof. | Dr. | András Kiss | Institut für Pathologie | Semmelweis Universität Budapest |
Dr. | Ambusz Malyi | Semmelweis Universität Budapest | ||
Dr. | Maximilian Seidl | Institut für Pathologie | Universitätsklinikum Düsseldorf | |
PhD | Pia Hönscheid | Institut für Pathologie | Universitätsklinikum Carl Gustav Carus Dresden | |
Dr. | Kim Christin Honselmann | Klinik für Chirurgie | Universitätsklinikum Schleswig-Holstein Lübeck | |
Prof. | Dr. | Jens Höppner | Klinik für Chirurgie | Universitätsklinikum Schleswig-Holstein Lübeck |
Prof. | Dr. | Tobias Keck | Klinik für Allgemeine Chirurgie | Universitätsklinikum Schleswig-Holstein Lübeck |
PD | Dr. | Birte Kulemann | Klinik für Chirurgie | Universitätsklinikum Schleswig-Holstein Lübeck |
Prof. | Dr. | Ulrich Wellner | Klinik für Chirurgie | Universitätsklinikum Schleswig-Holstein Lübeck |
Barbara Grünwald | Princess Margaret Cancer Centre | University of Toronto | ||
Prof. | Dr. | Oliver Schilling | Institut für Klinische Pathologie | Universitätsklinikum Freiburg |
Prof. | Dr. | Georg Häcker | Institut für Mikrobiologie und Hygiene | Universitätsklinikum Freiburg |
Prof. | Dr. | Toni Cathomen | Institut für Transfusionsmedizin und Gentherapie | Universitätsklinikum Freiburg |
PD | Dr. | Rebecca Kesselring | Klinik für Allgemein- und Viszeralchirurgie | Universitätsklinikum Freiburg |
Dr. | Philipp Holzner | Klinik für Allgemein- und Viszeralchirurgie | Universitätsklinikum Freiburg | |
Dr. | Christopher Berlin | Klinik für Allgemein- und Viszeralchirurgie | Universitätsklinikum Freiburg | |
Dr. | Claudia Läßle | Klinik für Allgemein- und Viszeralchirurgie | Universitätsklinikum Freiburg | |
Dr. | Clara Unger | Klinik für Frauenheilkunde | Universitätsklinikum Freiburg | |
Prof. | Dr. | Thalia Erbes | Klinik für Frauenheilkunde | Universitätsklinikum Freiburg |
Prof. | Dr. | Michael Quante | Klinik für Innere Medizin II | Universitätsklinikum Freiburg |
Prof. | Dr. | Betram Bengsch | Klinik für Innere Medizin II | Universitätsklinikum Freiburg |
Dr. | Maike Hofmann | Klinik für Innere Medizin II | Universitätsklinikum Freiburg | |
Dr. | Ann-Christin Eder | Klinik für Nuklearmedizin | Universitätsklinikum Freiburg | |
PD | Dr. | Constantinos Zamboglou | Klinik für Strahlenheilkunde | Universitätsklinikum Freiburg |
Dr. | Andreas Thomsen | Klinik für Strahlenheilkunde | Universitätsklinikum Freiburg | |
Dr. | Alexander Rühle | Klinik für Strahlenheilkunde | Universitätsklinikum Freiburg | |
Konstantinos Grapatsas | Klinik für Thoraxchirurgie | Universitätsklinikum Freiburg | ||
Dr. | Wilhelm Konrad | Klinik für Urologie | Universitätsklinikum Freiburg | |
Dr. | Daniel Schlager | Klinik für Urologie | Universitätsklinikum Freiburg | |
Prof. | Dr. | Martin Czerny | Klinische Forschung Herz- u. Gefäßchirurgie | Universitäts-Herzzentrum Freiburg - Bad Krozingen |
Prof. | Dr. | Mathias Siepe | Klinik für Herz- und Gefäßchirurgie | Universitäts-Herzzentrum Freiburg - Bad Krozingen |
Prof. | Dr. | Daniel Dürschmied | Klinik für Kardiologie und Angiologie I | Universitäts-Herzzentrum Freiburg - Bad Krozingen |
2023
- Morphologic and molecular analysis of liver injury after SARS-CoV-2 vaccination reveals distinct characteristics. Journal of Hepatology (accepted) Uzun et al
- Multiparametric magnetic resonance imaging for radiation therapy response monitoring in soft tissue sarcomas: a histology and MRI co-registration algorithm. Jung M, Bogner B, Diallo TD, Kim S, Arnold P, Füllgraf H, Kurowski K, Bronsert P, Jungmann PM, Kiefer J, Kraus D, Rovedo P, Reisert M, Eisenhardt SU, Bamberg F, Benndorf M, Runkel A. Theranostics. 2023 Mar 5;13(5):1594-1606. doi: 10.7150/thno.81938. PMID: 37056570; PMCID: PMC10086213.
2022
- Accuracy of cone-beam computed tomography, digital mammography and digital breast tomosynthesis for microcalcifications and margins to microcalcifications in breast specimens. Neubauer C, Yilmaz JS, Bronsert P, Pichotka M, Bamberg F, Windfuhr-Blum M, Erbes T, Neubauer J. Sci Rep. 2022 Oct 21;12(1):17639. doi: 10.1038/s41598-022-21616-3. PMID: 36271228; PMCID: PMC9587219.
- Krüppel-like factor 7 influences translation and pathways involved in ribosomal biogenesis in breast cancer. Lüchtenborg AM, Metzger P, Cosenza Contreras M, Oria V, Biniossek ML, Lindner F, Fröhlich K, Malyi A, Erbes T, Gensch N, Maurer J, Thomsen A, Boerries M, Schilling O, Werner M, Bronsert P. Breast Cancer Res. 2022 Oct 3;24(1):65. doi: 10.1186/s13058-022-01562-8. PMID: 36192788; PMCID: PMC9531505.
- Quantitative Analysis of Diffusion Weighted Imaging May Improve Risk Stratification of Prostatic Transition Zone Lesions. Engel H, Oerther B, Reisert M, Kellner E, Sigle A, Gratzke C, Bronsert P, Krauss T, Bamberg F, Benndorf M. In Vivo. 2022 Sep-Oct;36(5):2323-2331. doi: 10.21873/invivo.12963. PMID: 36099133; PMCID: PMC9463894.
- Mesenchymal Stromal Cells Do Not Cause Radioprotection of Head-and-Neck Squamous Cell Carcinoma. Rühle A, Lies M, Strack M, Perez RL, Bieber B, Thomsen AR, Bronsert P, Huber PE, Hess J, Knopf A, Wuchter P, Grosu AL, Nicolay NH. Human Int J Mol Sci. 2022 Jul 12;23(14):7689. doi: 10.3390/ijms23147689. PMID: 35887032; PMCID: PMC9323822.
- Long-Term Diabetes Improvement After Duodenal Exclusion in Zucker Diabetic Fatty Rats Is Associated with Prevention of Strain-Specific Pancreatic Remodeling and Increased Beta Cell Proliferation. Seifert G, Malyi A, Bronsert P, Plohmann S, Kesselring R, Fichtner-Feigl S, Marjanovic G, Fink JM, Laessle C. Obes Surg. 2022 Jun;32(6):1980-1989. doi: 10.1007/s11695-022-06040-w. Epub 2022 Apr 6. PMID: 35384574; PMCID: PMC9072278.
- Prognostic Impact of Tumor Budding in Intrahepatic Cholangiocellular Carcinoma. Budau KL, Sigel CS, Bergmann L, Lüchtenborg AM, Wellner U, Schilling O, Werner M, Tang L, Bronsert P. J Cancer. 2022 May 6;13(8):2457-2471. doi: 10.7150/jca.63008. PMID: 35711834; PMCID: PMC9174844.
- Moving translational mass spectrometry imaging towards transparent and reproducible data analyses: a case study of an urothelial cancer cohort analyzed in the Galaxy framework. Föll MC, Volkmann V, Enderle-Ammour K, Timme S, Wilhelm K, Guo D, Vitek O, Bronsert P, Schilling O. Clin Proteomics. 2022 Apr 19;19(1):8. doi: 10.1186/s12014-022-09347-z. PMID: 35439943; PMCID: PMC9016955.
- Overexpression of integrin alpha 2 (ITGA2) correlates with poor survival in patients with pancreatic ductal adenocarcinoma. Deichmann S, Schindel L, Braun R, Bolm L, Taylor M, Deshpande V, Schilling O, Bronsert P, Keck T, Ferrone C, Wellner U, Honselmann K. J Clin Pathol. 2022 Apr 8:jclinpath-2022-208176. doi: 10.1136/jclinpath-2022-208176. Epub ahead of print. PMID: 35396216.
- Spontaneous activity of the mitochondrial apoptosis pathway drives chromosomal defects, the appearance of micronuclei and cancer metastasis through the Caspase-Activated DNAse. Haimovici A, Höfer C, Badr MT, Bavafaye Haghighi E, Amer T, Boerries M, Bronsert P, Glavynskyi I, Fanfone D, Ichim G, Thilmany N, Weber A, Brummer T, Spohr C, Öllinger R, Janssen KP, Rad R, Häcker G. Cell Death Dis. 2022 Apr 7;13(4):315. doi: 10.1038/s41419-022-04768-y. PMID: 35393399; PMCID: PMC8990075.
2021
- Multiple Immunostainings with Different Epitope Retrievals-The FOLGAS Protocol. von Schoenfeld A, Bronsert P, Poc M, Fuller A, Filby A, Kraft S, Kurowski K, Sörensen K, Huber J, Pfeiffer J, Proietti M, Stehl V, Werner M, Seidl M. Int J Mol Sci. 2021 Dec 25;23(1):223. doi: 10.3390/ijms23010223. PMID: 35008649; PMCID: PMC8745613.
- Proteome biology of primary colorectal carcinoma and corresponding liver metastases. Fahrner M, Bronsert P, Fichtner-Feigl S, Jud A, Schilling O. Neoplasia. 2021 Dec;23(12):1240-1251. doi: 10.1016/j.neo.2021.10.005. Epub 2021 Nov 9. PMID: 34768110; PMCID: PMC8591399.
- Spatially confined sub-tumor microenvironments in pancreatic cancer. Grünwald BT, Devisme A, Andrieux G, Vyas F, Aliar K, McCloskey CW, Macklin A, Jang GH, Denroche R, Romero JM, Bavi P, Bronsert P, Notta F, O'Kane G, Wilson J, Knox J, Tamblyn L, Udaskin M, Radulovich N, Fischer SE, Boerries M, Gallinger S, Kislinger T, Khokha R. Cell. 2021 Oct 28;184(22):5577-5592.e18. doi: 10.1016/j.cell.2021.09.022. Epub 2021 Oct 12. PMID: 34644529.
- Organotypic Slice Cultures as Preclinical Models of Tumor Microenvironment in Primary Pancreatic Cancer and Metastasis.Braun R, Lapshyna O, Eckelmann S, Honselmann K, Bolm L, Ten Winkel M, Deichmann S, Schilling O, Kruse C, Keck T, Wellner U, Bronsert P, Brandenburger M. J Vis Exp. 2021 Jun 22;(172). doi: 10.3791/62541. PMID: 34251366.
- Surgeon vs Pathologist for Prediction of Pancreatic Fistula: Results from the Randomized Multicenter RECOPANC Study. Timme S, Kayser G, Werner M, Litkevych S, Màlyi AG, Keck T, Bronsert P, Wellner UF, Petrova E, Honselmann KC; RECOPANC Review Group. J Am Coll Surg. 2021 Jun;232(6):935-945.e2. doi: 10.1016/j.jamcollsurg.2021.03.024. Epub 2021 Apr 19. PMID: 33887486.
Kontakt:
PD Dr. Peter Bronsert
Prof. Dr. Dr. Christoph Schell
Core Facility für Histopathologie und Digitale Pathologie
Institut für Klinische Pathologie
Breisacher Straße 115a
79106 Freiburg
Tel.: +49 761 270 80590
Fax: +49 761 270 81970
pathologie.projektkoord@uniklinik-freiburg.de
Postanschrift:
Postfach 214
79002 Freiburg